Differentialt antal hvide blodlegemer

Når blodet centrifugeres, er overfladen gråhvid, og denne del af cellerne kaldes hvide blodlegemer. Det er en gruppe af heterogene blandede celler med forskellige morfologi-, funktions- og udviklings- og differentieringsstadier.Den er opdelt i granulocytter, lymfocytter og monocytter i henhold til morfologi, funktion og kilde. Kun antallet af hvide blodlegemer for at bestemme den kliniske betydning har visse begrænsninger, det skal kombineres med hvide blodlegemer og klassificering for at analysere tilstanden, som er mere nøjagtig. Grundlæggende information Specialistklassificering: klassifikation af vækst- og udviklingsundersøgelse: blodundersøgelse Gældende køn: om mænd og kvinder anvender faste: faste Tip: Prøv at spise mindre og spise så meget som muligt, og arranger din kost med rimelighed. Normal værdi Neutrofil stavformet kerne 1% ~ 5% (0,04 ~ 0,5) × 109 / L, lobular nucleus 50% ~ 70% (2 ~ 7) × 109 / L, eosinophils 0,5% ~ 5,0% ( 0,05 ～ 0,5) × 109 / L; basofiler 0% ～ 1% (0 ～ 0,1) × 109 / L; lymfocytter 20% ～ 40% (0,2 ～ 0,4) × 109 / L; monocytter 3% ～ 8% (0,08 til 0,8) × 109 / L. Klinisk betydning Unormalt resultat (1) Neutropeni ses ved akutte og suppurative infektioner (sputum, abscess, lungebetændelse, blindtarmsbetændelse, erysipelas, sepsis, visceral perforation, skarlagensfeber osv.), Forskellige forgiftninger (acidose, uræmi, blyforgiftning, kviksølvforgiftning) Osv.), Vævsskade, ondartede tumorer, akut massiv blødning, akut hemolyse. Reducer forekomsten af ​​infektionssygdomme såsom tyfus, paratyphoid, mæslinger, influenza, kemoterapi, strålebehandling. Nogle blodsygdomme (aplastisk anæmi, agranulocytose, leukopeni, myelodysplastisk syndrom osv.), Hypersplenisme, autoimmune sygdomme og lignende. (2) Eosinophilia findes i allergiske sygdomme, hudsygdomme, parasitiske sygdomme, visse blodsygdomme, post-stråling, splenektomi og genopretning af infektionssygdomme. Reduceret i tyfus, paratyphoid, anvendelse af glukokortikoider, adrenocorticotropic hormon. (3) Lymfocytose ses ved visse infektionssygdomme (kikhoste, infektiøs mononukleose, infektiøs lymfocytose, skoldkopper, mæslinger, røde hunde, fåresyge, viral hepatitis, lymfocytisk leukæmi og lymfatiske stoffer). Tumor osv.). Reducer den akutte fase, der ses i mange infektionssygdomme, strålingssyge, immunsvigt osv. (4) Mononukleære celler findes i tuberkulose, tyfusfeber, infektiv endocarditis, malaria, monocytisk leukæmi, kala-azar og restitutionsperioden for infektionssygdomme. (5) basofiler er mere almindelige ved kronisk myeloide leukæmi, basofil leukæmi, Hodgkins sygdom, splenektomi og så videre. Forholdsregler Klassificeringen af ​​hvide blodlegemer ændres kraftigt af faktorer som tekniske faktorer og cellefordelingsfaktorer, så spredningen af ​​klassificeringstællinger er stor, og andelen af ​​neutrofiler og lymfocytter, der tegner sig for en stor andel i klassificeringen, fordeles normalt og tegner sig for en lille andel. Såsom eosinofiler, basofiler og monocytter er Powson-distribution. I henhold til Rümke et al. Er 95% og 99% konfidensgrænser for hvid blodlegemer differentieret. For eksempel, hvis en blodprøve bruges til 200 klassificeringer af hvide blodlegemer, hvor 60% (p) granulocytter og 40% (q) af andre celler, er standardfejlen (SEp) med sandsynligheden for p og n er antallet af celler, der tælles. Tabel Low95% og High95% rækker og p60, q40 kolonner, krydsene får 53 og 67, det vil sige 95% konfidensgrænsen i dette eksempel er 53%, den højeste er 67%, den samme 99% konfidensgrænse er 51% ~ 69%. Det vil sige, når den samme blodprøve eller en anden blodprøve fra den samme patient yderligere klassificeres af hvide blodlegemer, er der en 95% sandsynlighed for, at det kategoriske antal granulocytter varierer fra 53% til 67%, og mulighedsområdet på 99% er 51% til 69%. Hvis det overskrider dette interval, anses det for, at klassificerings- og tællefejlen er for stor, hvilket ikke opfylder kvalitetskravene og bør tages alvorligt. Inspektionsproces (1) Tag en lille dråbe blod i den ene ende af objektglasset, og brug en skubbe til at skubbe omkredsen omkring 35 ~ 45 ° for at efterlade en passende mængde hulrum til at skelne det tynde blod i hovedet, kroppen og halen. Længden af ​​blodfilmen er ikke mindre end 2,5 cm, og den resterende plads til den anden ende af objektglasset er ca. 1 cm. Blodfilmen tørres og farves. (2) Wrights Giemsa-sammensatte farvningsmetode: flad blodprøve på farvningsstativet, tilsæt 3 til 5 dråber farvningsopløsning, straks dækker blodfilmen, tilsæt ca. 5 til 10 dråber buffer efter ca. 30s, ryst forsigtigt glasset Tabletterne eller blæses let blandingen for at blande farveopløsningen med pufferopløsningen. Efter 5 til 10 minutter vaskes farvestoffet op med vand og tørres til mikroskopisk undersøgelse. (3) Hurtig metode: anbring den hurtige farvningsvæske A og væske B i passende farvningstank i passende størrelse, nedsænk blodfilmen i væsken i 30'erne, vask den, og dypp den derefter ned i væsken i 30'erne, vask den og tør den til mikroskopisk undersøgelse. (4) Mikroskopisk undersøgelse: Vælg krydset mellem hjernehinderne og halerne, og de røde blodlegemer er ikke overlappet med oliespejle. Undersøgelsen skal have en bestemt retning fra top til bund og til venstre og højre og tage højde for kanterne på begge sider af den lange film af blodfilmen, ellers påvirker det forskellige celler. Registreringshastighed. Tæl 100 til 200 hvide blodlegemer, klassificer dem efter deres morfologi, og find procentdelen. Ikke egnet til mængden Dem uden undersøgelsesindikationer bør ikke testes. Bivirkninger og risici 1. Infektion: Vær opmærksom på aseptisk operation, når blod opsamles, undgå forurening af vand og andre dele på blodopsamlingsstedet for at undgå lokal infektion. 2, blødning: efter at blodet har fået en komplet komprimeringstid, især koagulopati, blødningstendens, for at undgå lokal subkutan oser, blå mærker og hævelse.