serum urinstof

Urea (ure) er slutproduktet af pattedyrsproteinkatabolisme. Det syntetiseres i leveren med ornithin og udskilles hovedsageligt af nyrerne. Da urinstof har en lille molekylvægt og er let at opløse, og diffusionskraften er ekstremt stor, er koncentrationen af ​​urinstof i cerebrospinalvæske, serosal effusion, spyt og sved stort set de samme. Koncentration af blodurea påvirkes hovedsageligt af nyrefunktion og proteinindtagelse og katabolisme. På nuværende tidspunkt er de mest almindeligt anvendte metoder til bestemmelse af urinstof i kliniske laboratorier diacetyl-hydrazin-metode og enzymkoblingshastighedsmetode. Grundlæggende information Specialistklassificering: urinundersøgelsesklassifikation: blodundersøgelse Gældende køn: om mænd og kvinder anvender faste: faste Analyseresultater: Under det normale: Mindre almindelig i klinisk praksis. Hovedsageligt på grund af skader på leverparenchym, reduceret produktion. Såsom akut gul leveratrofi, cirrhose, giftig hepatitis, svær anæmi. Normal værdi: Serumurinstof: 2,0-7,1 mmol / l Over normal: 1, nyresygdom såsom akut nyresvigt, kronisk nefritis, nyre arteriosklerose, kronisk pyelonephritis, nyretuberkulose, nyretumor osv., Mild nedsat nyrefunktion, BUN kan være uændret. BUN steg, når 60% til 70% af den effektive nefron blev beskadiget. Derfor kan BUN-måling ikke bruges som en indikator på tidligt nedsat nyrefunktion, men den har særlig værdi til diagnose af nyresvigt, især uræmi, og kan bedømme tilstanden og estimere prognosen. Graden af ​​nyresvigt kan bedømmes på baggrund af BUN-måleresultaterne. A. Nyresvigt kompenseret Ccr faldt, blod Cr var normalt. BUN var normal eller let forhøjet (9 mmol / L). C. Ccr 445 μmol / L i uremisk fase, BUN> 20 mmol / L. 2, forårsager før-nyre eller post-renal faktorer signifikant reduktion i urinproduktion eller urinlukning, såsom svær opkast, diarré forårsaget af dehydrering, ødemer, ascites, kredsløbssvigt, samt urinvejssten, prostatahypertrofi, tumorer osv. obstruktion. 3, overdreven proteinnedbrydning i kroppen, såsom forbrændinger i stort område, større operationer, øvre gastrointestinal blødning, hyperthyreoidisme og akutte infektionssygdomme. På dette tidspunkt steg BUN, mens andre nyrefunktionstest generelt var normale. Negativ: positiv: Påmindelse: Reagensglas, prøvekop og reaktionskop skal være fri for ammoniak, ren og fri for syre- og alkaliforurening. Normal værdi 1. Diacetyl-hydrazin-metode 2,0 til 7,1 mmol / l. 2. Metoden til enzymkoblingshastighed er 2,0 til 7,1 mmol / l. Klinisk betydning 1. Forøgelse: (1) Nyresygdomme såsom akut nyresvigt, kronisk nefritis, renal arteriosklerose, kronisk pyelonephritis, nyretuberkulose, avancerede nyretumorer osv., Når nyrefunktionen er lidt nedsat, kan BUN være uændret. BUN steg, når 60% til 70% af den effektive nefron blev beskadiget. Derfor kan BUN-måling ikke bruges som en indikator på tidligt nedsat nyrefunktion, men den har særlig værdi til diagnose af nyresvigt, især uræmi, og kan bedømme tilstanden og estimere prognosen. Graden af ​​nyresvigt kan bedømmes på baggrund af BUN-måleresultaterne. A. Nyresvigt kompenseret Ccr faldt, blod Cr var normalt. BUN er normal eller let forhøjet (<9 mol / L). B. Dekompensering af nyresvigt (nitrogenæmi eller uræmi) Ccr faldt markant (<0,83 ml / s), blod Cr steg (> 90 mmol / L), BUN moderat forøget (> 9 mmol / L). C. Beregnet <0,33 ml / s i uremisk fase, blod Cr> 445μmol / L, BUN> 20mmol / L. (2) Prærenal eller post-renal faktorer forårsager signifikant reduktion i urinproduktion eller urinlukning, såsom svær opkast, dehydrering forårsaget af diarré, ødemer, ascites, cirkulationssvigt og urinberegninger, prostatahypertrofi, tumorer osv. Vejhindring. (3) Overdreven proteinnedbrydning i kroppen, såsom forbrændinger i stort område, større operationer, øvre gastrointestinal blødning, hypertyreoidisme og akutte infektionssygdomme. På dette tidspunkt steg BUN, mens andre nyrefunktionstest generelt var normale. 2, lavere: klinisk mindre almindelig. Hovedsageligt på grund af skader på leverparenchym, reduceret produktion. Såsom akut gul leveratrofi, cirrhose, giftig hepatitis, svær anæmi. Høje resultater kan være sygdomme: uræmi, forsigtighedsregler ved nyresvigt 1, diacetyl-oximmetode: (1) Urea kan ikke direkte reagere med diacetyl-hydrazin, og formålet med at tilsætte diacetyl-hydrazin og stærk syre er at generere diacetyl, som kan reageres hermed. Tilsætningen af ​​Fe3 + (eller Cd2 +) er for at eliminere interferensen af ​​hydroxylamin dannet under reaktionen, og thiourea kan øge reaktionens følsomhed med 20 gange. Metoden introduceret i mange tidligere bøger er at kombinere diacetyl-hydrazin med thiosemicarbazid. Begge kan imidlertid danne et nålelignende gult stof, som overvindes ved anvendelse af thiourea i et surt reagens. (2) Syrekoncentrationen er positivt korreleret med absorbansen, så syrekoncentrationen skal være nøjagtig. Diameteren på det anvendte reagensglas skal være så ensartet som muligt i det kogende vand. Væskeniveauet skal være over væskestanden i reagensglasset, og kogetiden bør anbringes i reagensglasset for at koge igen. Det er bedst at måle standard og kvalitetskontrol hver gang. Når man observerer de dynamiske ændringer af urinstof, skal patienter holdes konstant i proteinindtagelse, og blod blev opsamlet på tom mave. Når prøven ikke kan analyseres med det samme, kan serum (eller plasma) ekstraheres i en forseglet prøvekop og opbevares ved 4 ° C i 7 dage. Når resultatet er større end 20 mmol / L, ændres prøven til 10 μl, og resultatet ganges med 2. (3) Selvom denne metode tilføjer thiosemicarbazid og cadmiumioner, forbedrer den farveudviklingsintensiteten og farvestabiliteten til en vis grad, men der er stadig fading (ca. 5% i timen), så efter kogende opvarmning og farveafkøling, Bør være rettidig farvesammenligning. (4) Den anvendte 20 μl-sampler skal korrigeres før brug. (5) Plasma (klar) urinsyre, kreatinin, aminosyrer og andre nitrogenholdige stoffer har ingen interferens i denne test, hæmolyse kan resultere i høje resultater, og gulsot kan resultere i lave resultater. (6) Plasma (klart) urinstofindhold er nært beslægtet med proteinindholdet i fødevaren. I diæter med højt proteinindhold kan mængden af ​​urinstof i plasma (klar) øges markant, mens indholdet af proteiner med lavt proteinindhold reduceres betydeligt. 2. Metode til enzymkoblingshastighed: (1) Det mest almindelige problem med denne metode er svigt i reagenset eller forurening af reaktionssystemet. De mest ustabile af reagenserne er NADH og glutamatdehydrogenase. I analyseprocessen skal man være opmærksom på følgende aspekter: hvis plasma bruges, kan fluorokemiske forbindelser eller NH4 + antikoagulanter ikke anvendes. Førstnævnte kan hæmme ureaseaktivitet, mens sidstnævnte kan deltage i reaktionen. (2) Reagensblankabsorbansen skal være større end 1,2A, ellers oxideres NADH. For de samme reagenser og instrumenter skal F-værdien være relativt konstant under forudsætning af at analysebetingelserne er konstante, ellers er reagenset ugyldigt. (3) Ryst ikke det rekonstituerede reagens for at undgå deaktivering af enzymet. Reagenset skal rekonstitueres uden ammoniak. Reagensbægeren, prøveloppen og reaktionskoppen skal være fri for ammoniak, ren og fri for syre- og alkaliforurening.Kalibreres hver gang og testes med kvalitetskontrolserum. Inspektionsproces Diacetyl-hydrazin-metode: 1. Reagensglasset er markeret med et blankt rør "B", et målerør "U" og et standardrør "S". 2 henholdsvis i målerøret plus plasma (klart) 20 μl, standardrør plus standardpåføringsopløsning 20 μl, tomt rør plus destilleret vand 20 μl. 3. 3 ml af hvert surt reagens og 3 ml diacetylhydrazinreagens. 4. Bland grundigt, kog i 10 minutter, fjern og afkøl. 5, 520nm bølgelængde, tomt rør til nul kolorimetrisk, aflæs standardrør og målerørets absorbans. NOTER: 1. Urea reagerer ikke direkte med diacetyl-hydrazin. Formålet med at tilsætte diacetyl-hydrazin og stærk syre er at generere diacetyl, der kan reagere med det. Tilsætningen af ​​Fe3 + (eller Cd2 +) er for at eliminere interferensen af ​​hydroxylamin dannet under reaktionen, og thiourea kan øge reaktionens følsomhed med 20 gange. Metoden introduceret i mange tidligere bøger er at kombinere diacetyl-hydrazin med thiosemicarbazid. Begge kan imidlertid danne et nålelignende gult stof, som overvindes ved anvendelse af thiourea i et surt reagens. 2. Syrekoncentrationen er positivt korreleret med absorbansen, så syrekoncentrationen skal være nøjagtig. Diameteren på det anvendte reagensglas skal være så ensartet som muligt i det kogende vand. Væskeniveauet skal være over væskestanden i reagensglasset, og kogetiden bør anbringes i reagensglasset for at koge igen. Det er bedst at måle standard og kvalitetskontrol hver gang. Når man observerer de dynamiske ændringer af urinstof, skal patienter holdes konstant i proteinindtagelse, og blod blev opsamlet på tom mave. Når prøven ikke kan analyseres med det samme, kan serum (eller plasma) ekstraheres i en forseglet prøvekop og opbevares ved 4 ° C i 7 dage. Når resultatet er større end 20 mmol / L, ændres prøven til 10 μl, og resultatet ganges med 2. 3. Selvom denne metode tilføjer thiosemicarbazid og cadmiumioner, forbedrer den farveudviklingsintensiteten og farvestabiliteten til en vis grad, men der er stadig fading (ca. 5% i timen). Efter kogende opvarmning og farvekøling, Rettidig sammenligning af farver. 4. Den anvendte 20 μl-sampler skal korrigeres inden brug. 5. Plasma (klar) urinsyre, kreatinin, aminosyrer og andre nitrogenholdige stoffer har ingen interferens i denne test, hæmolyse kan resultere i høje resultater, og gulsot kan resultere i lave resultater. 6. Plasma (klart) urinstof er tæt relateret til proteinindholdet i fødevaren. I diæter med højt proteinindhold kan mængden af ​​urinstof i plasma (klar) øges markant, mens indholdet af proteiner med lavt proteinindhold reduceres betydeligt. Metode til enzymkoblingshastighed: Reagensprøveforholdet var 70: 1, 37 ° C, 340 nm, forsinkelsestiden var 30 s, og læsetiden var 30 sekunder. De specifikke analysebetingelser kan bestemmes i henhold til specifikationerne for kittet og instrumentet, helst hver gang. NOTER: 1. Det mest almindelige problem med denne metode er svigt i reagenset eller kontaminering af reaktionssystemet. De mest ustabile af reagenserne er NADH og glutamatdehydrogenase. I analyseprocessen skal man være opmærksom på følgende aspekter: hvis plasma bruges, kan fluorokemiske forbindelser eller NH4 + antikoagulanter ikke anvendes. Førstnævnte kan hæmme ureaseaktivitet, mens sidstnævnte kan deltage i reaktionen. 2. Reagensemnets absorbans skal være større end 1,2 A, ellers oxideres NADH. For de samme reagenser og instrumenter skal F-værdien være relativt konstant under forudsætning af at analysebetingelserne er konstante, ellers er reagenset ugyldigt. 3. Vibrer ikke det rekonstituerede reagens for at undgå deaktivering af enzymet. Reagenset skal rekonstitueres uden ammoniak. Reagensbægeren, prøveloppen og reaktionskoppen skal være fri for ammoniak, ren og fri for syre- og alkaliforurening.Kalibreres hver gang og testes med kvalitetskontrolserum. Ikke egnet til mængden Generelt ingen tabuer. Bivirkninger og risici Generelt ingen tabuer.